乙型肝炎病毒基因在动物细胞中复制表达及其应用研究进展
乙型肝炎病毒(HBV)感染的宿主范围很窄,仅限于人和灵长类动物,这使得对HBV的研究受到限制。HBV细胞模型的建立,为研究其基因突变、蛋白合成、加工、表达以及病毒颗粒最后形成等问题,提供了方便可靠的系统,为进一步分析HBV生物学特性、致病机制以及乙型肝炎的预防、诊断、治疗等奠定基础。本文就近年来HBV基因在动物细胞中复制表达及其应用方面的研究进展,综述如下。 1 HBV DNA转染动物细胞
自从1982年Christman成功地应用磷酸钙沉淀法,将HBV DNA导入NIH3T3细胞以来,将HBV DNA导入HepG2细胞系、Huh6-c15细胞系、Huh-7细胞系、vero细胞系、Ltk-细胞系等,也相继获得成功。由表1可见,HBV DNA转染不同的靶细胞后,其转录物种类有很大差别。Raney等[1]将HBV DNA分别导入HepG2.1、HepG2、Huh-7和HeLa S3中,研究发现不同的靶细胞产生的HBV mRNA不同,进一步研究发现不同的肝细胞所含的肝细胞核因子(HNF)不同,不同的HNF对HBV大蛋白启动子的转录所起的调节作用也有所不同。Zhang等[2]应用核衣壳启动子诱变的方法证实,在HepG2.1和HeLa S3中,核衣壳启动子活性决定区位于SP1结合位点的CpB和CpC, 而在HepG2中则位于CpE和CpF。综上所述,启动子活性的组织特异性不同,不同的肝细胞所含HNF不同,可能是导致HBV转录物不同以及表达的病毒蛋白种类不同的原因。所以选择合适的转染细胞,建立更接近HBV自然感染状态的HBV细胞模型,显得尤为重要。
2 HBV直接感染动物细胞用HBV DNA转染细胞,与HBV自然感染存在一定的距离,不能完全模拟HBV在体内的感染情况。近年来,许多学者用HBV直接感染细胞[3~7],以期更接近HBV自然感染(表2)。1988年,Gripon应用HBV直接感染成人肝细胞获得成熟病毒颗粒,HBV感染人胎肝细胞和人肝癌细胞也相继获得了成功。选择各种类型人肝细胞作为靶细胞,可模拟HBV感染人体的状况,使其获得的结论更适合人类。近几年,肝细胞长期原代培养的方法学有了很大的发展,有人在常规胶原被覆培养24小时后再加一层胶原,形成双层凝胶的三明治状培养,可在50天内保持良好的肝细胞功能,为研究HBV生物学特性奠定了基础。
Mabit等研究发现,肝癌细胞在HBV感染后4天分泌3种病毒蛋白:HBsAg、前S1蛋白和前S2蛋白,随后前S2蛋白慢慢减少,但至培养21天仍维持在较高水平,前S1蛋白在培养7天后即迅速下降,至培养21天后消失。Nothern印迹分析显示2.2 kb和2.6 kb两种转录物均存在,但3.5 kb mRNA没有检测到,说明HBV DNA早期转录物编码的仅是外壳蛋白,释放的仅仅是HBV非成熟的核衣壳,并非是完整、成熟的病毒颗粒。
Ochija等用HBV体外感染原代培养人胎肝细胞,在培养上清中检测到成熟的病毒颗粒,收集感染后4~16天的培养上清液,再感染另一胎肝细胞培养系统。结果在后者的培养上清中检测到HBsAg和HBeAg,说明前者的培养上清液具有感染性,提示感染HBV的胎肝细胞能释放具有感染性的成熟病毒颗粒。Hagelstein等用不同pH的缓冲液处理HBV,再感染原代培养的成人肝细胞,用选择性PCR进行检测,发现用pH低于4.3的缓冲液处理后,HBV仍具有感染性,只有当pH降至2.1时,才丧失感染性,说明HBV对酸有较强的抵抗力。
3 HBV细胞模型的应用3.1 对HBV基因表达和基因调控的研究 HBV DNA中有4个开放读码框(ORF),分别表达HBsAg、HBeAg/HBcAg、HBV DNAP、HBxAg。用含不同ORF的重组HBV DNA转染靶细胞对HBV结构基因进行研究。研究发现大蛋白单独表达时,Dane颗粒不能装配,必须要有中蛋白和主蛋白参与。大蛋白单独表达时,HBsAg能正常合成,但不能分泌至细胞外,造成大量HBsAg滞留在肝细胞浆内,形成“毛玻璃样肝细胞”[8];前C蛋白氨基末端的29个氨基酸是一种信号肽,与HBeAg分泌有关。进一步研究发现,对信号肽起重要调控作用的是前C基因的1896G和1899G[9]。HBV前S蛋白有两种异构体,分别位于病毒核衣壳的外面和内面。位于核衣壳外面的前S蛋白能与靶细胞上的病毒受体结合,影响病毒吸附靶细胞;内面的前S蛋白与病毒颗粒的装配有密切关系[10]。HBV核心启动子进行有规律的转录,对维持HBV正常复制周期非常重要,它调控HBV核心RNA和前基因组RNA的转录。Chen等[11]研究发现,包含连续4个TA的一段由15个核苷酸组成的序列,对直接、精确地启动核心RNA和前基因组RNA进行转录起着至关重要的作用。由于多数研究仅限于对某一基因片段的研究,而HBV基因内部有调控基因,基因片段间又有相互重叠,研究单一片段难以说明问题。何建文等[12]将二步法克隆的HBV全基因转染HepG2,在培养上清中检测到有HBsAg和HBeAg表达,转染细胞内HBV DNA的Southern印迹检测显示有HBV复制。
表1 HBV转染动物细胞的研究| 作者 | 年份 | 细胞系 | 转染方法 | 转录物 (kb) | 病毒蛋白 |
| Christman | 1982 | NIH3T3 | 磷酸钙沉淀法 | 0.4 2.3 3.2 4.0 5.0 8.0 | HBsAg |
| Sureau | 1986 | HepG2 | 电穿孔法 | 2.3 2.7 3.6 | HBsAg HBe/cAg |
| Tsurimoto | 1987 | Huh6-c15 | 磷酸钙沉淀法 | 2.1 2.4 3.5 5.0 | HBsAg HBeAg |
| Yaginuma | 1987 | Huh-7 | 磷酸钙沉淀法 | 1.4 1.7 2.0 2.2 2.9 3.2 3.6 | HBsAg HBeAg HBcAg |
| Takeshima | 1989 | Vero | 磷酸钙沉淀法 | 1.1 1.7 2.1 2.5 | HBsAg HBe/cAg |
| Suzuki | 1989 | HepG2 | 磷酸钙沉淀法 | 0.7 1.1 1.7 2.0 2.1 2.3 3.3 | 未测 |
| Seifer | 1990 | Ltk-细胞系 | 磷酸钙沉淀法 | 0.6 2.1 3.6 4.0 | HBsAg HBeAg |
| Roingeard | 1990 | HepG2 | 磷酸钙沉淀法 | 2.0 3.2 | HBsAg HBcAg HBeAg |
| Chen | 1992 | BALB/c小鼠肝细胞 | 磷酸钙沉淀法 | 2.5 3.0 3.2 4.0 5.0 | HBsAg |
| Muller | 1992 | 单核细胞系U-937 | 脂质体介导法 | 2.2 3.6 4.6 6.0 | HBsAg HBe/cAg |
| Galun | 1992 | COLO 320细胞 LS 180细胞 | 磷酸钙沉淀法 | 2.2 2.4 3.6 | HBsAg HBe/cAg |
| Diof | 1992 | SD大鼠肝细胞 | 磷酸钙沉淀法 | 2.1 2.4 3.5 | HBsAg HBcAg |
